爱华网2、 胶液的制备：称取0.4g 琼脂糖,置于200ml 锥形瓶中,加入50ml0.5×TBE 稀释缓冲液,放入
微波炉里(或电炉上)加热至琼脂糖全部熔化,取出摇匀,此为0.8％琼脂糖凝胶液。加热过程中要不时摇
动,使附于瓶壁上的琼脂糖颗粒进入溶液。加热时应盖上封口膜,以减少水份蒸发。
3、胶板的制备：将有机玻璃胶槽两端分别用橡皮膏(宽约1cm)紧密封住。将封好的胶槽置于水
平支持物上,插上样品梳子,注意观察梳子齿下缘应与胶槽底面保持1mm左右的间隙。
向冷却至50-60℃的琼脂糖胶液中加入溴化乙锭(E 溶液使其终浓度为0.5μg/ml(也可不把EB 加入
凝胶中,而是电泳后再用0.5μg/ml 的EB溶液浸泡染色)。用移液器吸取少量融化的琼脂糖凝胶封橡
皮膏内侧,待琼脂糖溶液凝固后将剩余的琼脂糖小心地倒入胶槽内,使胶液形成均匀的胶层。倒胶时的
温度不可太低,否则凝固不均匀,速度也不可太快,否则容易出现气泡。待胶完全凝固后拨出梳子,注意不
要损伤梳底部的凝胶,然后向槽内加入0.5×TBE稀释缓冲液至液面恰好没过胶板上表面。因边缘效应
样品槽附近会有一些隆起,阻碍缓冲液进入样品槽中,所以要注意保证样品槽中应注满缓冲液。
4、 加样：取10μl 酶解液与2μl6×载样液混匀,用微量移液枪小心加入样品槽中。若DNA 含
量偏低,则可依上述比例增加上样量,但总体积不可超过样品槽容量。每加完一个样品要更换tip头,以
防止互相污染,注意上样时要小心操作,避免损坏凝胶或将样品槽底部凝胶刺穿。
5、电泳：加完样后,合上电泳槽盖,立即接通电源。控制电压保持在60-80V,电流在40mA以上。
当溴酚蓝条带移动到距凝胶前沿约2cm 时,停止电泳。
6、 染色：未加EB 的胶板在电泳完毕后移入0.5μg/ml 的EB溶液中,室温下染色20-25 分钟。
7、 观察和拍照：在波长为254nm的长波长紫外灯下观察染色后的或已加有EB 的电泳胶板。
DNA存在处显示出肉眼可辨的桔红色荧光条带。紫光灯下观察时应戴上防护眼镜或有机玻璃面罩,以
免损伤眼睛。经照相机镜头加上近摄镜片和红色滤光片后将相机固定于照相架上，采用全色胶片，
光圈5.6,曝光时间10-120 秒(根据荧光条带的深浅选择)。
8、 DNA分子量标准曲线的制作：在放大的电泳照片上,以样品槽为起点,用卡尺测量λDNA的
EcoRⅠ和HindⅢ酶切片段的迁移距离,以厘米为单位。以核苷酸数的常用对数为纵坐标,以迁移距离为
横坐标,在坐标纸上绘出连结各点的平滑曲线,即为该电泳条件下DNA分子量的标准曲线。
9、 DNA 酶切片段大小的测定：在放大的电泳照片上,用卡尺量出DNA样品各片段的迁移距离,
根据此数值,在DNA分子量标准曲线上查出相应的对数值,进一步计算出各片段的分子量大小(若用单
对数坐标纸来绘制标准曲线,则可根据迁移距离直接查出DNA片段的大小)。反之,若已知DNA 片段的
大小亦可由标准曲线上查出它预计的迁移距离。
10、 DNA酶切片段排列顺序的确定：根据单酶切,双酶切和多酶切的电泳分析结果,对照DNA酶
切片段大小的数据进行逻辑推理,然后确定各酶切片段的排列顺序和各酶切位点的相对位置。以环状
图或直线图表示,即成该DNA 分子的限制性内切酶图谱。
[注意] 1.酶切时所加的DNA 溶液体积不能太大，否则DNA溶液中其他成分会干扰酶反应。
2、酶活力通常用酶单位（U）表示，酶单位的定义是：在最适反应条件下，1小时完全降解1mg
lDNA 的酶量为一个单位，但是许多实验制备的DNA 不象lDNA那样易于降解，需适当增加酶的使用
量。反应液中加入过量的酶是不合适的，除考虑成本外，酶液中的微量杂质可能干扰随后的反应。
3、市场销售的酶一般浓度很大，为节约起见，使用时可事先用酶反应缓冲液（1×）进行稀释。
另外，酶通常保存在50%的甘油中，实验中，应将反应液中甘油浓度控制在1/10之下，否则，酶活
性将受影响。
4、 观察DNA 离不开紫外透射仪,可是紫外光对DNA分子有切割作用。从胶上回收DNA 时,应尽
量缩短光照时间并采用长波长紫外灯(300-360nm）,以减少紫外光切割DNA。
5、 EB 是强诱变剂并有中等毒性,配制和使用时都应戴手套,并且不要把EB洒到桌面或地面上。
凡是沾污了EB 的容器或物品必须经专门处理后才能清洗或丢弃。
6、 当EB 太多,胶染色过深,DNA 带看不清时,可将胶放入蒸馏水冲泡,30分钟后再观察。
